小鼠眼部取血(小鼠眼球取血技巧是什么?)
1.小鼠眼球取血技巧是什么?
小鼠摘除眼球采血及分离血清
一.器材
离心管，弯头镊子，离心机，移液器
二.步骤
1. 摘除眼球采血
(1)左手拇、食指抓取小鼠双耳及颈后皮肤，小指固定尾部；
(2)中指将小鼠左侧前肢轻压在胸骨心脏部位，无名指按在腹部，捻动拇指，轻压取血侧眼部皮肤，使眼球充血突出；
(3)用弯头镊夹取眼球；
(4)根据需要捻动拇指与食指的方向，使血液从眼眶内以不同速度垂直流入离心管；
(5)同时用左手中指轻按小鼠心脏部位，以加快心脏泵血速度；
(6)当血液流尽时，用脱臼法处死小鼠。
2. 分离血清
(1)将离心管中的血置37℃温箱或水浴1小时，也可室温2小时；
(2)再置4℃冰箱内3~4小时或过夜；
(3)待血液凝固血块收缩后，4000rpm离心10分钟；
(4)取上清于干净的离心管中，保存于-20℃，或加入防腐剂（0.01%硫柳汞或0.02%叠氮钠），置4℃冰箱中保存备用。
三.注意：
1. 采血前，可给小鼠喂点水；
2. 摘眼球采血取血量能达0.8~1.2ml，但老年和疾病小鼠血量会降低；
3. 采血场所有充足的光线；室温夏季保持在25~28℃，冬季，15~20℃为宜；
4. 防止血液浸入眼部周围毛发，否则会造成污染和溶血；
5. 按压心脏时，用力一定要适度，若用力过度，一是会造成动物采血中途死亡，使采血不完全，二是有可能引起溶血现象发生，影响实验结果；
6. 采血用的器材和试管必须保持清洁干燥；
7. 采血时要防止小鼠挣扎，否则会损失比较多的血样；
8. 血液凝固后不宜在4℃放置过久，否则会溶血。
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2.如何从大鼠眼眦中取血
1.大鼠麻醉问题；
我们将一浸过乙醚的棉球放在一小盘里，然后放在大鼠附近，再找个能罩住老鼠和盘子的大烧杯样的东西，留个口罩住老鼠。等他醉了就可实施手术了。要是中途有醒，直接握住大鼠，将其鼻子塞进乙醚的瓶子里。观察其麻醉状态。不易过深，要不就死掉了。血都会变成黑色的，还粘稠。手段有些暴力，爱护动物的筒子们不要责怪。
2.取血工具：
我们用的是化学上用来测熔点的毛细管，有一定硬度。用肝素钠注射液润洗过的，掰成几段，太短了手抓着不合适，太长了容易凝血。
3.手术手法：
在大鼠一侧的眼内侧眼球和内测眼睑与头平面呈60度左右的夹角，温柔的用力，就可见血源了。不要捅的太深，捅到骨头上，也不会出血。太浅老鼠受罪也取不出血来。要注意剪断老鼠的胡须，以防干扰或溶血。我都是两侧眼后轮流取的。
还有一个技术关键就是血流变慢的时候，要用握大鼠的食指和拇指向脑后静脉方向用力按压。或者一开始的时候就要握紧。
剩下的就是收集血液，我们当时是两个人帮忙完成的，一个人够呛。余下的都不是什么技术关键，不说了。
3.小鼠眼球静脉采血 这个实验过程中,需要的实验材料都有啥
这个实验我做过。
所有的材料要先清洗并灭菌。
1.用镊子直接将眼球摘除（这个是需要技巧的，有时候摘的不好，血会很少，最好先练习下）
2.摘除眼球后血就会直接流出来，这个时候用EP管，口挨着眼睛那里就可以接了，当时我用的1.5ml的EP管就差不多够用了。根据你小鼠的大小，可以提前先试一下大概能接多少。
3.接完后将EP管放在架子上放进4度凝固一会儿就可以离心了
4.离心后用移液枪取上清测定。
PS：抓老鼠要注意哦，小心被抓伤、咬伤。
