含糖量测定方法(如何检测糖分)
1.如何检测糖分
血糖测试结果反映的是即刻的血糖水平.糖化血红蛋白测试通常可以反映患者近8~12周的血糖控制情况.国际糖尿病明确规定糖化血红蛋白是国际公认的糖尿病监控“金标准”.如果空腹血糖或餐后血糖控制不好，糖化血红蛋白就不可能达标.
具体检测还是抽血然后专门的检验科医生用生化的方法检测出糖化血红蛋白的含量，这是检验科的事情了.标准是：4%~6%：血糖控制正常.6%~7%：血糖控制比较理想.7%~8%：血糖控制一般.8%~9%：控制不理想，需加强血糖控制，多注意饮食结构及运动，并在医生指导下调整治疗方案.>9%：血糖控制很差，是慢性并发症发生发展的危险因素，可能引发糖尿病性肾病，动脉硬化，白内障等并发症，并有可能出现酮症酸中毒等急性合并症.
2.糖的测定方法有哪些
1。
物理法，（1。旋光法，2。
折光法，3。比重法，） 2。
物理化学法，（1。点位法，2极普法，3。
光度法，4。色谱法）来源： 3。
化学方法，（1。斐林氏法。
2。高锰酸钾法。
3。碘量法。
4。铁氰化钾法。
5。蒽铜比色法。
6。咔唑比色法） 共计三大种，在测定其他碳水化合物时，往往是使其水解为糖再进行测定。
一。总糖的测定 食品中的总糖主要指具有还原性的葡萄糖，果糖，戊糖，乳糖和在测定条件下能水解为 还原性的单糖的蔗糖（水解后为1分子葡萄糖和1分子果糖），麦芽糖（水解后为2分子葡萄糖）以及可能部分水解的淀粉（水解后为2分子葡萄糖）。
还原糖类之所以具有还原性是由于分子中含有游离的醛基（-CHO）或酮基（=C=O）。 测定总糖的经典化学方法都是以其能被各种试剂氧化为基础的。
这些方法中，以各种根据斐林氏溶液的氧化作用的改进法的应用范围最广。在这里我们主要给大家介绍铁氰化钾法，蒽铜比色法，斐林氏容量法。
斐林氏容量法由于反应复杂，影响因素较多，所以不如铁氰化钾法准确，但其操作简单迅速，试剂稳定，故被广泛采用。蒽铜比色法要求比色时糖液浓度在一定范围内，但要求检测液澄清，此外，在大多数情况下，测定要求不包括淀粉和糊精，这就要在测定前将淀粉，糊精去掉，这样就使操作复杂化，限制了其广泛应用。
（一）铁氰化钾法考试大论坛 1。原理：样品中原有的和水解后产生的转化糖都具有还原性质，在碱性溶液中能将铁氰化钾还原，根据铁氰化钾的 浓度和检验滴定量可计算出含糖量。
其反应为下： C6H12O6+6K3[Fe(CN)6]+6KOH→（CHOH）4·（COOH）2+6K4[Fe(CN)6]+4H2O 滴定终了时，稍过量的转化糖即将指示剂次甲基兰还原为无色的隐色体。 2，试剂 1)1%的次甲基兰指示剂 2）盐酸（水解作用） 3)10%和30%的NaOH溶液 4)1%铁氰化钾（贮存特色瓶，临用前标定） 标定步骤 称蔗糖1。
0000g→定容500ml→取此液50ml→于100ml容量瓶→加hcl5ml→摇匀→65-70℃水裕15分钟→取出冷却→用30%NaOH中和→加水于刻度→倒入滴定管中→取10ml1%铁氰化钾于锥形瓶中→加10%NaOH2。 5ml加12。
5ml的水加玻璃珠颗粒→加热至沸→保持一分钟→加次甲基兰1滴→立即以糖液滴足至蓝色退去为止，记录用量。 正式滴定比较滴定时少0。
5ml糖液，煮沸1分钟，加指示剂一滴，再用糖液滴定至兰色褪去，计算铁氰化钾溶液的浓度。来源： A=(W·V)/(1000*0。
95) A：相当于10ml铁氰化钾溶液的转化糖的量（克） V：滴定时消耗的糖液的体积 W：称取纯蔗糖的量 1000：稀释比 0。95：换算等数 3.操作方法 稀释10g→用100ml水作溶液→于250ml容量瓶→加20%醋酸铅10ml→至沉淀完为止→加10ml10%NA2HPO4→至不在产生沉淀为止→加水至刻度→过滤-取滤液50ml→于100ml容量瓶中→按铁氰化钾标定法进行转化，中和及滴定 计算糖含量 总糖（以转化糖计%）=（A*1000）/(W·V)*100 A：相当于10ml铁氰化钾溶液的转化糖的重量， W：样品的重量 V：滴定时样液消耗的体积 4.实验应注意 （a）达终点时，过量的转化糖将指示剂次甲基兰还原为无色的隐色体，隐色体容量受空气中氧所氧化，很快又变 成指示剂的颜色。
（b）整个过程应在低温电炉上进行，滴定要速度，否则终点不明显 （c）糖与硫酸反应脱水生成羟甲基呋喃甲醛，生产物再与蒽铜缩合成兰色化合物，其颜色深浅与溶液中糖的浓度 成正比，单、双糖等糖类都直接于试剂发生作用，因此不需要水解。 （二）蒽铜的比色法 1。
原理：糖与硫酸反应脱水生成羟甲基呋喃甲醛，生产物再与蒽铜缩合成兰色化合物，其颜色深浅与溶液中糖的浓 度成正比，可比色定量。 2。
试剂 （1）硫酸锌溶液：溶解500g化学纯硫酸锌于500ml水中 （2）亚铁氰化钾溶液：溶解10。6g化学纯亚铁氰化钾于100ml水中 （3）0。
2%蒽铜试剂：溶解蒽铜0。2g于100ml95%硫酸中，置棕色瓶中冷暗处保存 （4）0。
1%葡萄糖液：准确称干燥葡萄糖0。1000g定容100ml 3。
操作方法 （1）标准曲线绘制 （2）100ml容量瓶编号 沸水浴加热6分钟，取出冷却→用1cm比色杯→610nm测定吸光度→作出以吸光度为横坐标，糖液浓度为纵坐标的准 曲线 （3）样品测定 称10g样品→于100ml热水加入500ml容量瓶中-加硫酸锌5ml→沸水浴5分钟→取出再摇动下加亚铁氰化钾5ml，→冷却→定容500ml→过滤→吸滤液25ml→于250ml容量瓶→定容250ml→取稀释液1ml，于比色管中→加10ml蒽铜试剂→摇匀→水浴加热6分钟→冷却→比色 试验注意 1，样液必须清澈透明，加热后不应有蛋白质沉淀 2，样品颜色较深时，可用活性炭脱色后再进行测定 3，此法与所用的硫酸浓度和加热时间有关 4，所取糖液浓度在1-2。 5mg/100ml之间 二。
还原糖的测定方法 还原糖包括葡萄糖、果糖、麦芽糖，在葡萄糖分子中含有淤青的醛茎，在果糖分子中含有淤青的酮茎，在乳糖中和 麦芽糖中含有淤青的半缩羧茎，因此都有还原性。在测定还原糖时一般测定总糖时所有将糖类水解为转化糖再测定 的方法都可用来测定还原糖。
（一）斐林氏容量法 1。此法的原理、。
3.食物热量和含糖量的测定
一、蔬菜含糖量在4%以下有如下蔬菜：大白菜、小白菜、菜花、菠菜、韭菜、茄子、卷心菜、龙须菜、番茄（西红柿）、苤蓝蒜黄、甘蓝菜、莴笋、盖菜、生菜、冬瓜、莴笋叶、绿豆芽、西葫芦、黄瓜、茴香、鸡毛菜、雪里红、芹菜、苦瓜、菜瓜、牛皮菜、油菜、丝瓜。
二、含糖量5—7%的蔬菜：扁豆、豇豆、大葱、菜椒、冬笋、韭菜苔、小葱、紫水萝卜、尖辣椒、茭白、蒜苗、青萝卜、长辣椒、毛笋、香菜、洋葱、黄豆芽、香椿、刀豆、胡萝卜。水果、蔬菜含糖量列表如下： 1%：南瓜 紫菜 生菜 2%：小白菜、小油菜、波菜、芹菜、青韭、蒜黄、窝笋、黄瓜西红柿、西葫芦、冬瓜、菜瓜 茴香、卷白菜。
3%：大白菜、黄韭、鲜雪里红、茄子、小红萝卜、角瓜、瓠子、鲜蘑菇、豌豆苗酸菜、塌棵菜 4%：洋白菜、韭菜、绿豆芽、豆角、西瓜、甜瓜、菜花、扁豆荚、茭白春笋、油菜、空心菜、臭豆腐。 5%：丝瓜、小葱、金花菜、青椒、青蒜、青梅、酱豆腐、韭菜花。
6%：白萝卜、青水萝卜、心青、大葱、韭菜苔、冬笋、草梅、桃、枇杷豆腐干、黄豆芽 7%：香椿、香菜、毛豆、黄桃子、黄胡萝卜。 8%：生姜、洋葱头、红胡萝卜、樱桃、柠檬 9%：橙子、波萝、李子、莲蓬、榨菜、蒜苗 10%：葡萄、杏 11%：柿子、沙果 12%：梨子、桔子、豌豆、橄榄 13%：柚子、苹果 14%：荔枝、山药 15%：苹果 16%：土豆 17%：石榴 20%：香蕉、藕 22%：红果 85%：粉条。
4.食物热量和含糖量的测定
一、蔬菜含糖量在4%
以下有如下蔬菜：
大白菜、小白菜、菜花、菠菜、韭菜、茄子、卷心菜、龙须菜、番茄（西红柿）、苤蓝蒜黄、甘蓝菜、莴笋、盖菜、生菜、冬瓜、莴笋叶、绿豆芽、西葫芦、黄瓜、茴香、鸡毛菜、雪里红、芹菜、苦瓜、菜瓜、牛皮菜、油菜、丝瓜。
二、含糖量5—7%的蔬菜：扁豆、豇豆、大葱、菜椒、冬笋、韭菜苔、小葱、紫水萝卜、尖辣椒、茭白、蒜苗、青萝卜、长辣椒、毛笋、香菜、洋葱、黄豆芽、香椿、刀豆、胡萝卜。
水果、蔬菜含糖量列表如下：
1%：南瓜 紫菜 生菜
2%：小白菜、小油菜、波菜、芹菜、青韭、蒜黄、窝笋、黄瓜西红柿、西葫芦、冬瓜、菜瓜
茴香、卷白菜。
3%：大白菜、黄韭、鲜雪里红、茄子、小红萝卜、角瓜、瓠子、鲜蘑菇、豌豆苗酸菜、塌棵菜
4%：洋白菜、韭菜、绿豆芽、豆角、西瓜、甜瓜、菜花、扁豆荚、茭白春笋、油菜、空心菜、臭豆腐。
5%：丝瓜、小葱、金花菜、青椒、青蒜、青梅、酱豆腐、韭菜花。
6%：白萝卜、青水萝卜、心青、大葱、韭菜苔、冬笋、草梅、桃、枇杷豆腐干、黄豆芽
7%：香椿、香菜、毛豆、黄桃子、黄胡萝卜。
8%：生姜、洋葱头、红胡萝卜、樱桃、柠檬
9%：橙子、波萝、李子、莲蓬、榨菜、蒜苗
10%：葡萄、杏
11%：柿子、沙果
12%：梨子、桔子、豌豆、橄榄
13%：柚子、苹果
14%：荔枝、山药
15%：苹果
16%：土豆
17%：石榴
20%：香蕉、藕
22%：红果
85%：粉条
5.可溶性糖含量的测定方法有哪些
测定方法有以下几种：
1.蒽酮法测定可溶性糖
2.苯酚法测定可溶性糖
3.3 ,5 –二硝基水杨酸比色法测定还原糖
4.斐林试剂比色法测定还原糖
斐林试剂比色法测定还原糖步骤
一、原理
植物组织中的可溶性糖可分为还原糖（主要是葡萄糖和果糖）和非还原糖（主要是蔗糖）两类。还原糖具有醛基和酮基，在碱性溶液中煮沸，能把斐林试剂中的 Cu 2+ 还原成 Cu + ，使蓝色的斐林试剂脱色，脱色的程度与溶液中含糖量成正比，在 590 nm 波长下比色测定吸光度，查标准曲线，即可计算出所测样品中还原糖的含量。本方法也可用于测定蔗糖及总糖含量。
二、实验材料、试剂与仪器设备
（一）实验材料
新鲜植物样品或烘干粉碎过的植物样品。
（二）试剂
1. 斐林试剂 A 液： 40 g CuSO 4 · 5H 2 O 溶解于蒸馏水定容至 1000 mL 。
2. 斐林试剂 B 液： 200g 酒石酸钾钠（ KNaC 4 H 4 O 6 · 5H 2 O ）与 150g NaOH 溶于蒸馏水中，并定容至 1000 mL 。
A 、B 两液分别贮存，使用前等体积混合。
3. 0.1 %葡萄糖标准液：取 80 ℃下烘至恒重的葡萄糖 0.1000 g ，加蒸馏水溶解，定容至 100 mL 。
4. 0.1mol/LNaOH 。
5. 甲基红指示剂： 0.1 g 甲基红溶于 250 mL 60 %乙醇中。 6. 10 % Pb(Ac) 2 。 7. 饱和 Na 2 SO 4 。
（三）仪器设备
分光光度计，分析天平，离心机，水浴锅，具塞刻度试管，刻度吸管，容量瓶，研钵。
三、实验步骤
1 . 标准曲线的制作 取 7 支试管，按表 24 – 4 分别加入各溶液。 将以上各管混合后加塞，于沸水浴中加热 15 min 。取出后自来水冷却， 1500 r/min 离心 15 min 。取上清液，用分光光度计在 590 nm 波长下比色，以蒸馏水作对照，读取吸光度。用空白管的吸光度与不同浓度糖的各管的吸光度之差为横坐标，对应的糖含量为纵坐标，绘制标准曲线。
2. 样品中还原糖的提取 取新鲜的植物样品洗净、擦干、剪碎，称取 3.00 g ，放入研钵中研磨至糊状，用水洗入大试管中。体积为 10 ~ 15 mL 时，加 2 ~ 3 滴甲基红指示剂，如呈红色，可用 0.1 mol/L 的 NaOH 中和至微黄色。若用风干样品，可称取干粉 3.00 g ，先在烧杯中用少量水湿润，然后用水洗入 250 mL 容量瓶中，如显酸性，可用上法中和。 将大试管置于 80 ℃的恒温水浴中保温 30 min ，其间摇动数次，以便将还原糖充分提取出来。对含蛋白质较多的样品，此间可加 10 % Pb(Ac) 2 ，除去蛋白质，至不再产生白色絮状沉淀时，加饱和 Na 2 SO 4 除去多余的铅离子。 30 min 后取出冷却，将提取液全部转入 100 mL 容量瓶中。定容至刻度，摇匀后过滤待测。
3. 样品测定 吸取 6 mL 待测液，加 4 mL 斐林试剂，其他操作与标准曲线相同，在 590 nm 波长下读取吸光度。以不含样品的空白管的吸光度减去样品管的吸光度，在标准曲线上查出糖含量。
